色譜流動相的制備： 1 M甲酸銨溶液：溶解 63 g甲酸銨于1 L HPLC級的水中。 流動相A：在1 L HPLC級的水中，加入5 mL 1 M甲酸銨溶液。 流動相B：在1 L HPLC級的甲醇中，加入5 mL 1 M甲酸銨溶液。

　　樣品制備(蔬菜與水果基質) 基于Anastassiadies等人提出的方法[1]： 1. 稱量10 g 混合樣品； 2. 加入100 μL 內標溶液 (D5-Atrazine，1 μg/mL)； 3. 加入10 mL乙腈，劇烈振搖； 4. 加入4 g無水MgSO4和1 g NaCl； 5. 馬上渦旋混合，以防止MgSO4共聚物的生成； 6. 振搖30 s后，4300 r/min離心5 min； 7. 轉移初提液1 mL至含有150 mg無水MgSO4的離心管中； 8. 混合，5200 r/min 離心1 min； 9. 轉移上清液500 μL，用水稀釋到1 mL，得到提取液濃度為0.5 g/mL

　　基于Klein and Alder等人提出的方法[2, 3]： 1. 在5 g或10 g樣品中，加入水到10 mL； 2. 加20 mL甲醇，使用UltraTurrax 組織勻漿機勻漿2 min； 3. 有時需要過濾，或離心； 4. 加入NaCl 溶液 (100 mL水中含20 g NaCl)，每6 mL加入NaCl溶液2 mL； 5. 用5 mL樣品溶液浸泡 ChemElut 柱； 6. 5 min后，用16 mL二氯甲烷洗脫； 7. 40 ℃揮發至干； 8. 用甲醇與水的混合溶液1.25 mL（甲醇0.25 mL，水1 mL）重新溶解； 9. 用0.45 μm濾膜過濾。

　　基于Lehotay et al.[4]提出的方法： 1. 使用Molinex 混合器或類似設備勻質水果或蔬菜樣品； 2. 加入乙腈，( 15.0 ± 0.05 ) g勻質的樣品加乙腈15 mL，超聲提取2 min后，混旋5 min；分析氨基甲酸酯農藥的實驗方法? 60 ? 3. 加入6 g無水MgSO4和1.5 g NaCl的混合物，劇烈振搖1 min； 4. 3000 r/min 離心5 min； 5. 取5 mL上層溶液，加入1.8 g無水MgSO4和0.3 g Bondesil C8 吸附劑； 6. 振搖20 s； 7. 使用Eppendorf 5301型濃縮儀，或類似設備揮發至干； 8. 用乙腈 / 水＝1 / 9的溶液1 mL重新溶解樣品； 9. 12000 r/min 高速離心 2 min； 10. 上清液轉入自動進樣器的進樣瓶中備用。

　　樣品制備(動物組織)[5] 1．稱取10 g試樣（豬肉、牛肉、羊肉、兔肉、雞肉）(精確至0.01 g)，放入盛有20 g無水硫酸鈉的50 mL 離心管中，加入35 mL環己烷 + 乙酸乙醋混合溶劑，用均質器在15000 r/min均質提取1.5 min，把離心管放 在離心機中，在3000 r/min離心3 min。上清液通過裝有無水硫酸鈉的筒形漏斗，收集于100 mL雞心瓶中， 離心管中的動物組織殘渣再用35 mL環己烷 + 乙酸乙醋混合溶劑提取一次，離心后上清液轉移到筒形漏斗 中，合并提取液，將提取液于40 ℃水浴用旋轉蒸發器旋轉蒸發至約5 mL，待凈化。若以脂肪計，將提取 液收集于已稱量的雞心瓶中，用旋轉蒸發器在40 ℃水浴蒸發至5 mL，然后再用氮氣吹干儀吹干殘存的溶 劑，雞心瓶稱量后，待凈化。 2．將濃縮的提取液或脂肪用乙酸乙醋 + 環己烷混合溶劑 (1+1) 溶解轉移至10 mL容量瓶中，用5 mL 環己烷 + 乙酸乙酷混合溶劑分兩次洗滌雞心瓶，并轉移至上述10 mL容量瓶中，再用環己烷 + 乙酸乙酷混 合溶劑定容至刻度，搖勻將樣液過濾入10 mL試管中，供凝膠滲透色譜儀凈化，收集22～40 min的餾分于 100 mL雞心瓶中，并在40 ℃水浴旋轉蒸發至0.5 mL。用氮氣吹干，再用1.0 mL乙睛 + 水 (60+40) 溶解殘渣， 供液相色譜一串聯質譜進行檢測。

　　色譜分離條件 Agilent 1100 系統：G1312A二元泵系統、G1367A型自動進樣器、柱溫箱。 色譜柱：Phenomenex Synergi Fusion-RP反相柱，50 mm×2 mm，4 μm，80 ?。 流動相：A相—水 + 5 mM 甲酸銨；B相—甲醇 + 5mM 甲酸銨。

　　MS/MS 檢測 API 3200?、3200 QTRAP? LC-MS/MS液質聯用系統。TurboIonSpray? 離子源，正離子模式，MRM掃描方式。